Azospirillum brasilense é uma bactéria promotora de crescimento vegetal (bpcv) atualmente utilizada como inoculante em diversas culturas. uma vez que a condição essencial para que ocorra o estímulo efetivo do crescimento vegetal por bpcv é a sua capacidade de sobreviver na rizosfera, são necessários métodos analíticos precisos para identificar e monitorar as células viáveis presentes em formulações de inoculantes ou nas plantas. o objetivo deste estudo foi desenvolver um ensaio de reação em cadeia da polimerase (qpcr) associado ao corante monoazida de propídio (pma) para avaliar a viabilidade celular de a. brasilense cepa fp2 em inoculantes e em raízes de milho. a. brasilense foi cultivado em meio de cultura específico submetido à tratamento térmico à 50ºc de zero a 240 min. raízes de milho foram cultivadas in vitro e colhidas sete dias após a inoculação (dai). a quantificação de a. brasilense foi realizada por qpcr, pma-qpcr e contagem de colônias em placa. a qpcr foi realizada utilizando iniciadores específicos para a cepa azor2.1. as eficiências das curvas padrão variaram de 85% a 99%. os limites de detecção (lod) foram 102 cópias do genoma e 104 ufc / g de raiz fresca. os resultados obtidos usando pma-qpcr e contagem em placa após tratamento térmico foram semelhantes (de 107 a 102 e 107 a 100 ufc/ml) e a diminuição das ufc de a. brasilense foram observadas de acordo com o aumento do tempo de aquecimento. enquanto isso, os resultados obtidos por qpcr permaneceram constantes (de 108 a 106 ufc/ml). os resultados de enumeração obtidos para de raízes de milho por qpcr (~ 8 log ufc/g) foram maiores que os obtidos por pma-qpcr (~ 5 ou 6 log ufc/g) e contagem em placa (~ 5 ou 6 log ufc/g) . estes resultados mostraram que o ensaio pma-qpcr foi eficiente na quantificação de células viáveis de inoculantes e quando comparado com métodos dependentes de cultura, a combinação de pma-qpcr forneceu resultados confiáveis de maneira rápida e precisa.